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2023年4月5日发(作者:山东政法学院录取查询)
108
紫杉醇对
Raji
细胞的作用:
G2/
M
期阻滞和细胞凋亡*
周晓燕 许良中 朱伟萍 张泰明
(上海医科大学附属肿瘤医院分子病理研究室,上海200032)
摘要 目的 观察微管稳定剂紫杉醇对淋巴瘤Raji细胞的作用。 方法 检测紫杉醇对Raji细胞作用的时间
效应和剂量效应;在光镜剑荡江湖 和电镜下观察形态变化;用流式细胞仪分析细胞周期的改变。 结果和结论 紫杉醇对淋
巴瘤Raji细胞的增殖有明显抑制作用,4Lg/ml紫杉醇作用48h细胞生长抑制率达82.6%,形态学及流式细胞仪分
析显示
G2
/
M
期阻滞和细胞凋亡。这一作用机制将为临床治疗提供理论依据。
关键词 淋巴瘤 肿瘤细胞,培养 紫杉醇
THEEFFECTSOFTAXOLONRAJICELLS
:
G2
/
MARRESTSANDAPOPTOSIS
Zhou南北朝是什么朝代 Xiaoyan
,
Xu
Liangzhong,ZhuWeiping,toryofMolecularPathology,CancerHospital,ShanghaiMedicalUniversi-路从今夜白小说墨舞碧歌
ty,Shanghai200032
PURPOSE S Timeanddoseef-
fectsoftaxolweredetected
,
morphologicchangesunderlightmicroscopeandelectronmicroscopewereobserved
,
alterationofcellcyclewereanalysedusingflowcytometry
.
RESULTSANDCONCLUSION
Taxolcaninhibitthe
eofcellgrowthinhibitionis82.6%treatedwith4Lg/ls
showG
2
/hnismsoftaxolprovidetheoreticalguidanceforclinicaltreatments.
KEYWORDS Lymphoma Tumorcells,cultured Paclitaxel
*该课题由上海市医学领先专业95-Ⅲ002资助
紫杉醇(Taxol,paclitaxel)是从太平洋紫杉属
短叶紫杉茎皮中提取的新型抗癌药,体外研究表明
它对卵巢癌、乳腺癌、小细胞肺癌、恶性黑素瘤和白
血病等多种恶性肿瘤细胞具有抑制作用,临床应用
显示对这些肿瘤具有治疗效果,它能与微管结合使
微管稳定性增强,抑制微管解聚,使细胞周期阻滞于
分裂期[1]。在早幼粒白血病细胞和人卵巢癌细胞还
可诱发细胞凋亡[2]。临床上对常规治疗效果不好的
淋巴瘤患者也使用紫杉醇,但紫杉醇对淋巴瘤细胞
的作用及作用机制尚不清楚,因此对此进行研究具
有重要的理论价值和临床指导意义。
材料和方法
一、细胞培养及药物
选用人EB病毒阳性的Burkitt淋巴瘤Raji细
胞株,细胞在含15%小牛血清(杭州四季青生物工
程研究所生产)的
RPMI
1640(
Gibco
公司产品)培
养液中生长,培养箱中CO2浓度为5%、温度37
℃、饱和湿度,紫杉醇(Bristol-MyersSquibb公司产
品)原液浓度6
mg
/
ml
,工作浓度为0.05
Lg
/
ml
~10
Lg/ml。
二、药物抑制的时间效应与剂量效应
收集对数生长期约2105/
ml
细胞1
ml
接种
于24孔板,常规条件下培养24h后加入紫杉醇使
其终浓度为4Lg/ml,继续培养,分别在3h、12h、24
h
、48
h
、72
h
计数;或加入不同浓度(0.01
Lg
/
ml
、
0.05
Lg
/
ml
、0.5
Lg
/
ml
、4
Lg
/
ml
、10
Lg
/
ml
)的药物
继续培养48h后计数,每组设3个复孔。
细胞生长抑制率(%)=
对照组活细胞数-实验组活细胞数
对照组活细胞数
100%
三、细胞形态学观察
(一)倒置显微镜及台盼蓝试验观察活细胞形态
第8卷 第2期
1998年6月
中国癌症杂志
CHINAONCOLOGY
Vol.8,No.2
Jun.1998
特征。
(二)收集细胞均匀涂片,丙酮固定后进行HE
或Giemsa染色。
(三)收集大于106细胞按常规程序固定处理,
经枸橼酸、醋酸铀染色后在透射电镜下观察细胞的
超微结构特征。
四、流式细胞计量术(
FCM
)分析
收集约2106细胞,70%酒精固韩信为什么看不起白起 定,1%
Triton
X-10010ml处理10min,0.01%RNA酶1ml处
理10min,0.25%碘化丙锭(PI)染色20min,上机
分析。流式细胞仪(
Facscalibur
)为
Becton
-
Dickin-
son公司产品。汞激发波长为488nm,每样品随机分
析1105细胞,分析软如梦令秋愁 件为Modfit。
结 果
一、紫杉醇对Raji细胞的抑制效应
4
Lg
/
ml
浓度紫杉醇与
Raji
细胞一起温育3
h
、
12h、24h、48h、72h,时间效应显示紫杉醇对细胞
生长抑制率分别为5.0%、8.8%、73.0%、82.6%、
93.6%,不同浓度0.01Lg/ml、0.05Lg/ml、0.5Lg/
ml
、4
Lg
/
ml
、10
Lg
/
ml
紫杉醇分别与
Raji
细胞温育
48h,剂量效应显示紫杉醇对细胞生长抑制率分别
为5.1%、36.7%、77.2%、82.6%、87.2%。
二、药物作用后的形态学改变
(一)倒置显微镜下可见细胞在一定浓度(0.05
Lg/ml~6Lg/ml)药物,一定时间(3~48h)作用后
透亮性下降,并见颗粒,但台盼蓝试验阴性。
(二)
HE
染色及电镜观察显示未经处理的
Raji
细胞核呈圆形,核浆比例大,核分裂少,无双核或多
核。药物作用后大部分细胞核膜消失呈爆炸式核分
裂,部分细胞核染色质固缩或断裂成多个致密小体,
此为凋亡细胞(见图1,2),另外可见双核或多核细
胞。
三、流式细胞计量术分析
紫杉醇作用后可见
G1期细胞逐渐减少,
G2/
M
期细胞逐渐增加,并在G1峰前出现亚二倍体峰即凋
亡小峰。如2Lg/ml紫杉醇作用48h后G1期细胞
由对照组(未用紫杉醇)34.75%降至2.04%,而
G2/
M
细胞由对照组的12.10%增至74.14%,在
G1
期前出现5.73%的凋亡细胞(见图3)。
图1 Raji细胞在紫彬醇作用后的光镜特征(HE400)
↑:分裂期细胞;R:凋亡细胞
图2
Raji
细胞在紫彬醇作用后细胞核凝集,断裂成致密小
体,细胞膜、细胞器完整(900)
图3 Raji细胞流式细胞分析(左:未用紫杉醇处理。G
0
/G
1
34.75%,G
2
/M12.10%,AP1.09%,右:2Lg/ml紫杉
醇作用16
h
。
G0
/
G1
2.04%,
G2
/
M
74.14%,
AP
5.73%
109 2期 紫杉醇对Raji细胞的作用:G
2
/M期阻滞和细胞凋亡*
讨 论
微管是调控细胞有丝分裂、细胞形态和细胞内
物质转运的细胞器。微管稳定剂紫杉醇的作用是:
使细胞阻滞于分裂期;使肿瘤细胞的运动能力下
降,抑制其侵袭性[3];使细胞内
bcl
-2磷酸化,导致
bcl
-2/
bax
异二聚体减聚,
bax
/
bax
增多,从而促进
细胞凋亡[4]。本研究首次观察紫杉醇对人恶性淋巴
瘤Raji细胞的作用,结果表明紫杉醇对Raji细胞具
有明显抑制作用,其作用机制主要表现在
G2/
M
期
阻滞和一定数量的细胞凋亡。这使紫杉醇应用于淋
巴瘤治疗具有理论依据并可指导该药的联合应用,
例如处于分裂期细胞比其他期细胞对放疗更为敏
感,因此使用紫杉醇后联合放疗可使患者获得更好
的治疗效果。文献[5]报道紫杉醇对31%的中度恶性
淋巴瘤、14%的低度恶性淋巴瘤和17%的套细胞淋
巴瘤有作用,在中度恶性淋巴瘤中对复发和难治性
淋巴瘤高度敏感,因此可选择紫杉醇作为这些类型
淋巴瘤治疗的有效药物之一。
紫杉醇易诱导白血病细胞,卵巢癌细胞进入细
胞凋亡,动物实验表明紫杉醇对淋巴瘤比对腺癌、鳞
癌、肉瘤更易诱导细胞凋亡[6]。在我们的实验中紫杉
醇诱导Raji进入细胞凋亡的比例不高(<8%),细
胞凋亡的特征之一
DNA
梯型图谱不易显示。关于
紫杉醇对不同肿瘤、同一肿瘤不同个体或不同环境
下的肿瘤细胞反应性不同的原因尚不清楚,可能与
细胞内在的基因状态如p53、bcl-2基因家族、c-myc
等的表达水平有关[7],也与细胞所处的环境如激素、
细胞因子等水平有关[8]。Raji为EB病毒阳性的细
胞株,EB病毒潜在膜蛋白LMP-1与bcl-2同源,其
本身或通过诱导
bcl
-2可抑制细胞凋亡[9],这可能是
Raji细胞在紫杉醇作用下细胞凋亡少的原因之一。
由于细胞凋亡与药物抑制作用具有相关性[6],而且
使肿瘤细胞发生凋亡是治疗的最终目的,因此对于
紫杉醇对
EB
病毒阴性的淋巴瘤细胞的作用、细胞
凋亡的调控机制及如何促进淋巴瘤细胞凋亡尚需进
一步深入的研究。临床上用紫杉醇治疗淋巴瘤时,应
注意到患者是否有
EB
病毒感染以及肿瘤细胞的基
因状态,这可能是与药物疗效有关的重要因素。
参考文献
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,1991,65:1107
(收稿日期:1997-06-10 修回日期:1997-07-25)
110 中 国 癌 症 杂 志 8卷
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